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細(xì)胞培養(yǎng)常見問題匯總

更新時(shí)間:2022-04-20點(diǎn)擊次數(shù):1370

細(xì)胞培養(yǎng)常見問題匯總



新買或惠贈(zèng)的細(xì)胞

1.新買的或惠贈(zèng)的細(xì)胞如何處理?

不管買的細(xì)胞、惠贈(zèng)的細(xì)胞,剛拿到手應(yīng)趕緊做這幾件事:檢測瓶子是否破裂;培養(yǎng)基是否漏出,是否渾濁;是否有支原體污染;迅速擴(kuò)增凍存。


2.能否使用與原先培養(yǎng)條件不同的培養(yǎng)基?

不能。每一細(xì)胞株均有其特定使用且已適應(yīng)的細(xì)胞培養(yǎng)基,若驟然使用和原先提供培養(yǎng)條件不同的培養(yǎng)基,細(xì)胞大都無法立即適應(yīng),造成細(xì)胞無法存活。


3.購買的細(xì)胞死亡或存活率不佳可能原因?

常見原因可能有:培養(yǎng)基使用錯(cuò)誤或培養(yǎng)基品質(zhì)不佳;血清使用錯(cuò)誤或血清的品質(zhì)不佳;解凍過程錯(cuò)誤;冷凍細(xì)胞解凍后,加以洗滌細(xì)胞和離心;懸浮細(xì)胞誤認(rèn)為死細(xì)胞;培養(yǎng)溫度使用錯(cuò)誤;培養(yǎng)箱氣體濃度達(dá)不到要求;細(xì)胞置于 –80 ℃ 太久。


復(fù)蘇凍存的細(xì)胞

4.收到的冷凍管瓶身破裂,瓶蓋有裂紋,或瓶蓋脫落的原因?

冷凍管瓶蓋裂紋,或瓶身破裂,可能是因?yàn)椴僮髡邐A取冷凍管時(shí)用力不當(dāng),造成冷凍管裂損,建議使用止血鉗小心夾取。另冷凍管瓶蓋松動(dòng)或松脫,是因熱脹冷縮的物理現(xiàn)象,冷凍管有可能因此而造成細(xì)胞污染,故冷凍管于放入和取出液氮桶時(shí),均應(yīng)立刻將冷凍管再一次扭緊。


5.冷凍管應(yīng)如何解凍?

將冷凍管由液氮桶中取出解凍時(shí),必須注意安全,可佩戴防護(hù)眼鏡和手套預(yù)防冷凍管的爆裂。取出冷凍管后,須立即放入 37 ℃ 水浴環(huán)境中快速解凍,輕搖冷凍管使其在 1 分鐘內(nèi)全部融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對細(xì)胞造成損害。并注意水面不可超過冷凍管蓋沿,否則易發(fā)生污染情形。


6.細(xì)胞冷凍管解凍培養(yǎng)時(shí),是否應(yīng)馬上去除 DMSO?

現(xiàn)在大多數(shù)實(shí)驗(yàn)室會(huì)在解凍細(xì)胞后加培養(yǎng)液將DMSO除去,但也有研究者認(rèn)為除少數(shù)特別注明對 DMSO 敏感的細(xì)胞外,絕大部分細(xì)胞株(包括懸浮性細(xì)胞),在解凍之后,可直接放入含有 10~15 ml 新鮮培養(yǎng)基的培養(yǎng)角瓶中,待隔天再置換新鮮培養(yǎng)基以去除 DMSO 即可,如此可避免大部分解凍后細(xì)胞無法生長或貼附的問題。


細(xì)胞培養(yǎng)用液

7.如何正確選擇培養(yǎng)基種類?

引用幾款比較經(jīng)典的培養(yǎng)基舉例:

圖片


8.如何選用特殊細(xì)胞系培養(yǎng)基?

培養(yǎng)某一類型細(xì)胞沒有固定的培養(yǎng)條件。在 MEM 中培養(yǎng)的細(xì)胞,很可能在 DMEM 或 M199 中同樣很容易生長??傊?,MEM 做粘附細(xì)胞培養(yǎng),RPMI-1640 做懸浮細(xì)胞培養(yǎng)是一個(gè)好的開始。


9.什么培養(yǎng)基中可以省去加酚紅?

酚紅在培養(yǎng)基中被用來作為 PH 值的指示劑:中性時(shí)為紅色,酸性時(shí)為黃色,堿性時(shí)為紫色。研究表明,酚紅可以模擬固醇類激素的作用(特別是雌激素)。為避免固醇類反應(yīng),培養(yǎng)細(xì)胞,尤其是哺乳類細(xì)胞時(shí),用不加酚紅的培養(yǎng)基。由于酚紅干擾檢測,一些研究人員在做流式細(xì)胞檢測時(shí),不使用加有酚紅的培養(yǎng)基。


10.細(xì)胞培養(yǎng)基的配制和儲(chǔ)存應(yīng)該注意什么?

細(xì)胞培養(yǎng)基配好后,要先抽取少許放入培養(yǎng)瓶內(nèi)在37℃培養(yǎng)箱內(nèi)放置24~48h,已檢測培養(yǎng)液是否有污染,然后方可用于實(shí)驗(yàn)。配置培養(yǎng)基所需的血清要合格并且保持穩(wěn)定。一個(gè)批號試用效果良好后,就可一次購入較多同一批號的血清,這樣實(shí)驗(yàn)條件穩(wěn)定,配液時(shí)調(diào)整pH值較容易。每次配液量以使用兩周左右的量為宜,一次配液不要太多,一是短期內(nèi)用不完造成營養(yǎng)成分損失需要補(bǔ)充,二是量大易造成污染。


11.為何培養(yǎng)基保存于 4 ℃ 冰箱中,顏色會(huì)偏紫色?

培養(yǎng)基保存于 4 ℃ 冰箱中,培養(yǎng)基內(nèi)的 CO2 會(huì)逐漸溢出,造成培養(yǎng)基越來越偏堿性,而培養(yǎng)基中的酸堿指示劑 (通常為 phenol red) 的顏色也會(huì)隨堿性增加而更偏紫色。培養(yǎng)基偏堿的結(jié)果, 將造成細(xì)胞生長停滯或死亡。若培養(yǎng)基偏堿時(shí),可以通入無菌過濾 CO2,以調(diào)整 pH 值。


12.什么情況下用到無血清培養(yǎng)基?

對于應(yīng)用培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行分離制備細(xì)胞生長因子、單克隆抗體等應(yīng)該選擇無血清培養(yǎng)基。


13.如何選擇正確的血清種類?

圖片

14.可否使用與原先培養(yǎng)條件不同的血清種類?

不能。血清是細(xì)胞培養(yǎng)上一個(gè)極為重要的營養(yǎng)來源,所以血清的種類和品質(zhì)對于細(xì)胞的生長會(huì)產(chǎn)生極大的影響。來自不同物種的血清,在一些物質(zhì)或分子的量或內(nèi)容物上都有所不同,血清使用錯(cuò)誤常會(huì)造成細(xì)胞無法存活。


15.血清滅活是否必須?

一般情況下不建議。熱滅活是以 56℃,30 分鐘來處理已解凍的血清,因?yàn)榇思訜岵襟E,可以使補(bǔ)體去活化,而補(bǔ)體所參與的反應(yīng)有:溶細(xì)胞活性,平滑肌的收縮,肥大細(xì)胞和血小板組胺的釋放,增強(qiáng)吞噬作用,淋巴細(xì)胞、巨噬細(xì)胞的趨化和激活。

實(shí)驗(yàn)顯示,經(jīng)過正確處理的熱滅活血清,對大多數(shù)的細(xì)胞而言是不需要的。經(jīng)此處理過的血清對細(xì)胞的生長只有微小的促進(jìn),或*沒有任何作用,甚至通常因?yàn)楦邷靥幚碛绊懥搜宓馁|(zhì)量,而造成細(xì)胞生長速率的降低。而經(jīng)過熱處理的血清,沉淀物的形成會(huì)顯著的增多, 這些沉淀物在倒立顯微鏡下觀察,像是 "小黑點(diǎn)",常常會(huì)讓研究者 誤以為是血清遭受污染,而把血清放在 37C 環(huán)境中,又會(huì)使此沉淀 物更增多,使研究者誤認(rèn)為是微生物的分裂擴(kuò)增。因此除了做免疫學(xué)相關(guān)實(shí)驗(yàn)和培養(yǎng)一些特定細(xì)胞,如平滑肌細(xì)胞、胚胎干細(xì)胞等,不需要做熱滅活處理。


16.培養(yǎng)基中是否添加抗生素?

除特殊篩選系統(tǒng)中外,一般正常培養(yǎng)狀態(tài)下,培養(yǎng)基中不應(yīng)添加任何抗生素。


17.何時(shí)更換培養(yǎng)基?

視細(xì)胞生長密度而定,或遵照細(xì)胞株基本數(shù)據(jù)上的更換時(shí)間,按時(shí)更換培養(yǎng)基即可。


細(xì)胞傳代

18.細(xì)胞傳代的方法都有哪些?

根據(jù)不同的細(xì)胞采取不同的方法。貼壁生長的細(xì)胞用消化法傳代;部分貼壁生長的細(xì)胞用直接吹打即可傳代;懸浮生長的細(xì)胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代,或用自然沉降法吸除上清后,再吹打。


19.原代培養(yǎng)的傳代應(yīng)注意的問題?

細(xì)胞沒有生長到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前,不要急于傳代;原代培養(yǎng)時(shí)細(xì)胞多為混雜生長,不同的細(xì)胞有不同的消化時(shí)間,因此要根據(jù)需要注意觀察及時(shí)處理,并根據(jù)不同細(xì)胞對胰蛋白酶的耐受時(shí)間而分離和純化所需要的細(xì)胞;

吹打細(xì)胞時(shí)動(dòng)作要輕巧盡可能減少對細(xì)胞的損傷;傳代時(shí)細(xì)胞接種數(shù)量要多一些,使細(xì)胞能盡快適應(yīng)新環(huán)境而利于細(xì)胞生存和增值;隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶。


20.使用胰蛋白酶時(shí)加入EDTA的目的?應(yīng)如何處理?

EDTA作用較胰蛋白酶緩和,主要作用在于能從組織生存環(huán)境中吸取Ca2+、Mg2+,這些離子是維持組織完整的重要因素。但EDTA單獨(dú)使用不能使細(xì)胞*分散,因而常與胰蛋白酶按不同比例混合使用,效果較好。常用比例為1:1或者2份EDTA:1份胰蛋白酶。EDTA的工作液濃度為0.02%,用不含Ca2+、Mg2+的BSS配置。如果使用EDTA,在終止消化前,需用緩沖液將消化液清除后才能加培養(yǎng)液。第一次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試管中,保存于 –20 ℃,避免反復(fù)冷凍解凍造成胰蛋白酶的活性降低,并可減少污染的機(jī)會(huì)。


21.欲將一般動(dòng)物細(xì)胞離心下來,其離心速率應(yīng)為多少轉(zhuǎn)速?

欲回收動(dòng)物細(xì)胞,其離心速率一般為800~1000 rpm,5~10 分鐘,過高的轉(zhuǎn)速,將造成細(xì)胞死亡。


22.細(xì)胞的接種密度為何?

依照細(xì)胞株基本數(shù)據(jù)上的接種密度或稀釋分盤的比例接種即可。細(xì)胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細(xì)胞無法生長的重要原因之一。


23.細(xì)胞交叉污染的可能原因?

多種細(xì)胞系進(jìn)行維持傳代操作時(shí),各細(xì)胞系所需的器材和溶液沒有嚴(yán)格分開,往往會(huì)使一種細(xì)胞被另一種細(xì)胞污染。




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